用途：
FluorPen FP 110叶绿素荧光仪可在实验室、温室或野外快速测量植物受生物或非生物胁迫后的光合活性状态，具有携带方便、准确度高、性价比高等特点；测量参数包括Fo、Ft、Fm、Fm’、QY、NPQ等，还可以进行OJIP分析和光响应曲线动力学研究。
PAR-FluorPen FP 110是FP 110的升级版，可以直接测量400-700nm范围内光合有效辐射PAR（umol/m2/s），光量子传感器对400-700nm波段的光具有均匀的响应，实时读数为20个测量值的平均值。
测量的数据存储于仪器内部，通过蓝牙或USB与计算机连接，采用专业的软件进行数据传输和分析，数据可视化。
测量原理：利用调制荧光测量技术，内置LED光源，内设测量给光程序，测量并计算叶绿素荧光相应的各种参数。
应用领域：
适用于光合作用研究和教学，植物及分子生物学研究，农业、林业，生物技术领域等。研究内容涉及光合活性、胁迫响应、农药药效测试、突变体筛选等。
植物光合特性和代谢筛选
生物和非生物胁迫的检测
植物抗胁迫能力或者易感性研究
代谢紊乱研究
生长长势与产量评估
植物——微生物交互作用研究
植物——原生动物交互作用研究
软件：
FluorPen 1.1版本，支持windows 7及更高版本
实时及远程控制功能
蓝牙和USB通讯
可视化数据，可转换成Excel格式
GPS地图
参数介绍
Ft——非光化光下的实时荧光，暗适应后Ft = Fo；
QY——PSII量子产量。暗适应QY = Fv/Fm，光适应QY = Fv’/Fm’;Fv/Fm是使用频繁的荧光参数。
OJIP——叶绿素荧光快速瞬态分析是一种简单、非侵入性测量叶绿体功能的方法。OJIP分析可以灵敏、准确的分析光化学系统的功能和活性。
NPQ——仪器提供2组测量程序，每组程序均有持续照光和黑暗恢复阶段。
NPQ测量是一种典型的量化暗适应后样品光化学和非光化学淬灭的工具。
LC——仪器内置3组光曲线测量程序，每组程序的脉冲数量、持续时间以及光强均不同。LC光曲线程序对连续光照下不同光强照射的样品光合作用进行连续测量，将光合作用速率与光强联系起来。
PAR——光合有效辐射（PAR-FluorPen FP 110版本具有此功能）
技术参数：
FP 110/S | Fo、Ft、Fm、Fm’、QY、OJIP、NPQ和Light Curve；标准叶夹 |
FP 110/D | Fo、Ft、Fm、Fm’、QY、OJIP、NPQ和Light Curve；可拆卸叶夹，叶夹单独出售 |
FP 110/P | Fo、Ft、Fm、Fm’、QY、OJIP、NPQ和Light Curve；室内长期测量 |
FP 110/X | Fo、Ft、Fm、Fm’、QY、OJIP、NPQ和Light Curve；定制型开放叶夹，可在环境光下测量 |
PAR-FP 110/S | Fo、Ft、Fm、Fm’、QY、OJIP、NPQ、Light Curve和PAR(400-700nm)；标准叶夹 |
PAR-FP 110/D | Fo、Ft、Fm、Fm’、QY、OJIP、NPQ、Light Curve和PAR(400-700nm)；可拆卸叶夹，叶夹单独出售 |
PAR-FP 110/X | Fo、Ft、Fm、Fm’、QY、OJIP、NPQ、Light Curve和PAR(400-700nm)；定制型开放叶夹，可在环境光下测量 |
光化光 | 10-100%可调，最大1000µmol(photon)/m2/s |
饱和光 | 10-100%可调，最大3000µmol(photon)/m2/s |
调制测量光 | 10-100%可调，最大0.09µmol(photon)/m2/脉冲 |
PAR测量 | 精度< 1%，最大3000µmol(photon)/m2/s（PAR-FP 110版本具有） |
余弦校准 | 80°入射角（PAR-FP 110版本具有） |
发射光源 | 蓝色LED光源，470nm |
探测波长范围 | PIN光电二极管带667~750nm滤光器 |
光学检测光圈直径 | 5mm(标准和开放叶夹)，6.5mm（可拆卸叶夹） |
NPQ1 | 光环境60s，5个脉冲；暗适应恢复88s，3个脉冲。 |
NPQ2 | 光环境200s，10个脉冲；按适应恢复390s，7个脉冲。 |
GPS | 内置GPS模块，输出带时间戳和地理位置的叶绿素荧光参数图表 |
FluorPen 软件 | 1.1版本，Windows 7或更高 |
内存 | 16Mb，可存储149000个数据 |
显示 | 2×8字符LCD显示屏 |
按键 | 密封2键 |
自动关机 | 无操作8分钟后自动关机 |
电源 | 可充电锂电池；2000mAh |
电池电量 | 典型情况下可连续操作48个小时，低电量LCD显示 |
通讯方式 | 蓝牙和USB |
尺寸 | 134mm×65 mm×33 mm |
重量 | 188克 |
样品固定器 | 机械式叶夹——标准叶夹，可拆卸叶夹 |
工作环境 | 温度0~+55℃，相对湿度0~95%（非冷凝） |
存储环境 | 温度-10~+60℃，相对湿度0~95%（非冷凝） |
叶绿素荧光 | 反射比 | OD680/720 | PAR | 光谱 | 吸收/透射/反射光谱 | 叶面积指数 | GPS | |
FluorPen | l | l | ||||||
PAR FluorPen | l | l | l | |||||
Monitoring Pen | l | l | l | |||||
AquaPen-C | l | l | l | |||||
AquaPen-P | l | l | ||||||
PlantPen NDVI&PRI | l | l | ||||||
N-Pen | l | l | ||||||
PolyPen | l | l | l | |||||
PolyPen-Aqua | l | l | l | |||||
SpectraPen LM | l | |||||||
SpectraPen LM | l | l | l | |||||
SpectraPen SP | l | l | ||||||
LaiPen | l | l | l |
案例介绍：
案例1：正常浇水与干旱胁迫下接种固氮螺菌属及丛枝菌对水稻光合活性(Fv/Fm)的影响
WW：正常浇水
D：干旱胁迫
M：Glomus intraradices
A：Azospirillum brasilense
无论是正常浇水会干旱胁迫，接种两种菌后水稻的光合效率均显著增加，而两种菌都接种的样品，光合效率增加较多，水分条件对水稻的光合效率没有显著影响。
案列2：盐胁迫对接种丛枝菌的莴苣光合活性(Fv/Fm)的影响
无论接种丛枝菌与否，随着盐度的增加，莴苣光合活性菌降低，80mM时的显著低于0和40mM，表明高浓度盐迫降低莴苣光合效率；无论什么盐浓度下，接种丛枝菌的莴苣光合活性菌显著高于未接种的，表明丛枝菌对莴苣的光合效率有显著促进作用，增加了莴苣的耐盐性。
近期发表文献：
AJIGBOYE O. O., LU CH., MURCHIE E. H., ET AL. (2017). Altered gene expression by sedaxane increases PSII efficiency, photosynthesis and growth and improves tolerance to drought in wheat seedlings. Pesticide Biochemistry and Physiology. Volume 137. Pages 49-61. DOI: 10.1016/j.pestbp.2016.09.008
CHEKANOV К., SCHASTNAYA E., SOLOVCHENKO A., ET AL. (2017). Effects of CO2 enrichment on primary photochemistry, growth and astaxanthin accumulation in the chlorophyte Haematococcus pluvialis. Journal of Photochemistry and Photobiology B: Biology. Volume 171. DOI 10.1016/j.jphotobiol.2017.04.028
DUARTE B., PEDRO S., MARQUES J. C., ET AL. (2017). Zostera noltii development probing using chlorophyll a transient analysis (JIP-test) under field conditions: Integrating physiological insights into a photochemical stress index. Ecological Indicators. Volume 76. DOI: 10.1016/j.ecolind.2017.01.023
HERNÁNDEZ-CLEMENTE R., NORTH P.R.J., HORNERO A., ET AL. (2017). Assessing the effects of forest health on sun-induced chlorophyll fluorescence using the FluorFLIGHT 3-D radiative transfer model to account for forest structure, Remote Sensing of Environment,. Volume 193. Pages 165-179. DOI: 10.1016/j.rse.2017.02.012
LEE M. W., HUFFAKER A., CRIPPEN D., ET AL. (2017). Plant Elicitor Peptides Promote Plant Defenses against Nematodes in Soybean. Molecular Plant Pathology. DOI: 10.1111/mpp.12570MARTEL A. B. AND QADERI M. M. (2017). Light quality and quantity regulate aerobic methane emissions from plants. Physiol Plantarum. Volume 159. DOI:10.1111/ppl.12514