用途：
Optoleaf便携式日射分光光度计可以用很低的成本同时测量大量位点（如大量叶片）的累积受光量。这种技术在植物光合作用研究、作物受光量和受光态势研究等方面，在植物生理生态学、农学、林学、园艺学、水生生物学、水生态学等领域得到了非常成功的应用。
该技术包括便携式日射分光光度计和配套的感光胶片两部分。配套的感光胶片是一种特制的感光胶片，其接受光照后会发生褪色，在不同的累积光强下，褪色率不同，累积光强越多，褪色率越高。测量时用剪刀裁切约1 cm宽小片，每一片均用便携式日射分光光度计测量其吸光度初值。然后将该胶片在傍晚时分贴在需要测量的位点（如植物叶片表面），经过1天、2天、3天或1周、2周、3周的日射后，在傍晚时取下该胶片，并再次用日射分光光度计测量吸光度。根据两次测量的吸光度，就可以计算出该胶片在测量时间（几天或几周）内接受到的累积光强。
由于配套的感光胶片非常便宜，因此可以大量的布点测量。如可以对一株植物的所有叶片都贴上日射计胶片进行积分光强测量；如可以对温室内的不同位点贴上日射计胶片进行测量用于温室光强均匀度分析；如可以贴在水中不同深度的支撑物表面进行水体积分光强剖面分析或浊度测量；等等。
一卷日射计胶片长10 m，如果裁成1 cm的小片进行测量的话，一卷胶片可进行1000次测量。胶片在不使用的时候可以在暗处存放数年。
功能特性:
低成本进行累积光强测量
可以贴在任何物体的表面（包括水下）进行测量
日射计胶片特别轻，几乎可以贴在任何叶片表面而不影响叶片自然角度
可以对大量位点的大量样品同时进行测量
可以在全国各地同时布点，测量完收集日射计胶片回到实验室进行测量
可以根据测量时间和光照强弱选择合适的日射计胶片
配备专用便携式日射分光光度计，适合现场测量
可以在水下进行测量
应用领域:
光合作用研究
作物冠层受光量研究
农作物、蔬菜、果树生理和栽培研究
森林生态学研究
设施园艺研究
水体光强剖面测量和浊度测量
水生植物生理生态学研究
技术规格：
Optoleaf便携式日射分光光度计参数： | |
型号 | D-Meter RYO-470M |
工作温度 | 5°C to 35°C |
测量范围 | 2.2 to 0.6 |
测量初始值 | 2.0 ± 0.2 |
外形尺寸 | W76×H27×D135mm |
重量 | 209g含电池 |
供电 | 使用两节AA电池 |
感光胶片参数： | |
种类 | Y-1W (Yellow-1Week) 长周期；O-1D (Orange-1Day)短周期；R-3D (Red-3Days)标准周期。 |
颜色 | 对应为黄、橙、红 |
感光胶片测量时间 | 夏季晴天分别为3-7/0.5-1/1-3天；夏多云或冬晴分别为5-14/1-2/2-5天；冬多云分别为1-3周/2-4/4-8天。 |
最大吸收波长 | 对应分别为468/492/521nm |
褪色率公式 | 对应为D／D0×100，D／D0×100， Log10(D／D0×100) |
备注：
1、上述的测量期间原则上是指导性的。可 根据实际测量条件进行调整；
2、感光胶片有正面和背面之分，您拿到的一卷胶片朝向卷轴的内侧为正面，测量时应该正面朝上接受光照
3、D0 =开始时的吸光度（曝光前）D =曝光后的吸光度；
4、开始时，检查测量点的曝光状态，确保吸光度不低于0.6，如果吸光度小于0.6，则无法进行正确的测量；（使用时的标准初始值：2.0±0.2）；
5、D-Meter系列配套薄膜测量仪可用于现场检测薄膜的曝光状态。
产地：日本
代表文献:
1.Isoda A., Yoshimura T., Ishikawa T., Nakamura Y., Nojima H., Takasaki Y., An analysis of light intercepting characteristics in rice by using simple integrated solarimeter. Tech. Bull. Fac. Hort. Chiba. Univ., 1990, 43: 39-43.
2. Isoda A., Yoshimura T., Ishikawa T., Radiation interception in field grown Soybeans measured by integrated solarimeter films. Jpn. J. Crop Sci., 1992, 61(1): 124-130.
3. Isoda A., Yoshimura T., Ishikawa T., Nojima H., Takasaki Y., Effects of leaf movement on radiation interception in field grown Leguminous crops: I. Peanut (Arachis hypogaea). Jpn. J. Crop Sci., 1993, 62(2): 300-305.
4. Isoda A., Yoshimura T., Ishikawa T., Wang P., Nojima H., Takasaki Y., Effects of leaf movement on radiation interception in field grown Leguminous crops: II. Soybean (Glycine max). Jpn. J. Crop Sci., 1993, 62(2): 306-312
5. Isoda A., Yoshimura T., Ishikawa T., Nojima H., Takasaki Y., Effects of leaf movement on radiation interception in field grown Leguminous crops: III. Relation to leaf temperature and transpiration among soybean cultivars. Jpn. J. Crop Sci., 1993, 63(4): 657-663.
6. Isoda A., Misa A. L., Nojima H., Takasaki Y., Effects of leaf movement on radiation interception in field grown Leguminous crops: III. Relation to leaf temperature and transpiration among peanut cultivars. Jpn. J. Crop Sci., 1996, 65(4): 700-706.
7. Isoda A., Yoshimura T., Ishikawa T., Nojima H., Takasaki Y., Solar radiation penetration and distribution in Soybean communities. Jpn. J. Crop Sci., 1994, 63(2): 298-304.
8. Kawamura K., Cho M., Takeda H., The applicability of a color acetate film for estimating photosynthetic photon flux density in a forest understory. J. Forest Res., 2005, 10(3): 247-249.
9. Wang C., Isoda A., Li Z., Wang P., Transpiration and leaf movement of Cotton cultivars grown in the field under arid conditions. Plant Prod. Sci., 2004, 7(3): 266-270.
10. Wang P., Isoda A., Wei G., Yoshimura T., Ishikawa T., Growth and Adaptation of Soybean cultivars under water stress conditions: II. Effects of leaf movement on radiation interception. Jpn. J. Crop Sci., 1994, 63(4): 699-705.